2.2 DAPI染色的染色体DNA的形态分别收集大蓟总黄酮处理细胞和未用药的细胞用定色剂(甲醇∶乙酸为3∶1)染色10 min,10 min后用PBS冲洗,细胞再用DAPI液(1 μg溶解在1ml PBS中),然后用固定液固定,染色体DNA的形态在荧光显微镜下观察。
2.3 DNA琼脂糖凝胶电泳分别收集大蓟总黄酮和顺铂处理细胞1×105 个,按酚、氯仿、异戊醇抽提,乙醇沉淀等常规方法提取细胞总DNA,2%琼脂糖凝胶电泳,紫外透射仪上观察DNA条带。
3 结果
3.1 MTT法测试结果用剂量12.5~200 μg /mg的大蓟总黄酮处理SMMC-7721和Hela细胞48h后,MTT法测定大蓟黄酮对癌细胞的抑制作用(见图1)。从图1可以看到,对SMMC-7721和Hela细胞的IC50分别为93.64 μg/ml和85.12 μg/ml,同空白对照组比较差异极显著(P<0.01)。当用剂量12.5~200 μg /mg的大蓟黄酮处理SMMC-7721和Hela细胞1,2 d或3 d后,对肿瘤细胞的生长(见图2),从图2可以看到,活细胞数随着大蓟黄酮浓度的增加而减少。研究结果表明大蓟黄酮对SMMC-7721和Hela细胞的抑制呈剂量和时间依赖性。用大蓟黄酮处理时间越长或剂量越大,对肿瘤细胞的抑制效果就越明显。
3.2 琼脂糖凝胶电泳结果琼脂糖凝胶电泳结果见图3,从 DNA电泳图(图3)上可以看到,癌细胞经100 μl/ml的大蓟总黄酮处理培养72h后,出现大小约为180~200 bp 整数倍的 DNA梯形断裂条带,而空白对照组细胞DNA提取物经琼脂糖凝胶电泳后只检测到一条总DNA条带。Hela细胞用100 μl/ml的大蓟黄酮处理培养72h后,出现大小约为180~200 bp 整数倍的 DNA梯形断裂条带(图3-A)。lane 3 为阳性对照(Hela 细胞用 0.1 μM taxol处理 4 h (图3-A)。图3大蓟总黄酮对SMMC 的电泳图。癌细胞经100 μl/ml的大蓟总黄酮处理培养72 h后,同样出现大小约为180-200 bp 整数倍的 DNA梯形断裂条带(图3-B, lane 4).研究结果表明大蓟黄酮能诱导SMMC-7721和Hela细胞凋亡。
3.3 DAPI 染色观察肿瘤细胞凋亡的特征凋亡的另一个特征是用DAPI 染色观察染色体DNA 的形态, 图 4(A) 为未处理的Hela细胞 染色体DNA,图4(B)是用大蓟总黄酮100 μl/ml处理 24 h后的Hela细胞 染色体DNA。Hela细胞在空白对照中出现分散的染色体DNA,图3(A),而用药物处理后Hela细胞的染色体DNA明显的随处理时间而改变,24 h 后, 染色体 DNA 在核膜附近浓缩成一个或几个明显的小体,图4(B)。图4(C~D) 为处理和未被处理的SMMC细胞染色体DNA 形态的变化,其凋亡特征也能观察到。
4 讨论
细胞凋亡是人体保持某一细胞群生存与死亡平衡的生理机制。它参与调节机体的发育、细胞的分化,体内正常细胞的更新和异常细胞的清除。普遍认为它与分裂、细胞分化类似,是一个级连式(Cascade)基因表达的结果,受许多因素的调控[4]。如果这一调控发生异常则会导致包括肿瘤、自身免疫病、神经系统疾病以及AIDS等许多疾病的发生。细胞凋亡的典型特征是:细胞凋亡过程中,被激活的核酸内切酶可有规律地将凋亡细胞DNA在两核小体间切断, DNA凝胶电泳时形成了特征性的DNA阶梯。形态上则表现为染色质固缩为不均一点状结构。细胞凋亡的另一显著特征是凋亡过程中交联细胞蛋白酶(transglutaminant)等的信号途径被激活,致使细胞浆浓缩形成的具有完整细胞膜包裹的凋亡小体(Apobody),电镜下,表现为凋亡发生早期,凋亡小体内含有正常形态的线粒体等细胞器[5]。
大蓟总黄酮能诱导人肝癌SMMC-7721细胞和人子宫癌Hela细胞的凋亡,通过MTT法检测,其对Hela细胞的IC50为85.12 μg/ml,对SMMC-7721细胞的IC50为93.64μg/ml。大蓟总黄酮诱导细胞凋亡,DAPI染色,显微镜下观察细胞核呈致密浓染的快状或颗粒状,与凋亡形态学改变相对应的生化学基础是细胞核小体连接处DNA被随机切成180~200 bp左右及其倍数的寡核苷片段,琼脂糖凝胶电泳可见典型的“梯形”带,大蓟总黄酮处理SMMC-7721和Hela细胞后,相差显微镜下观察,细胞体积缩小,核裂解,细胞出泡,形成凋亡小体(图4),细胞贴壁能力下降,逐渐从培养瓶壁上脱落下来,DAPI染色,显微镜下观察细胞核呈致密浓染的快状,DNA电泳可见典型的“梯形”带(图3 A、B)。说明SMMC-7721和Hela细胞经大蓟总黄酮处理后发生了凋亡特征性改变。
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