100%和70%乙醇 实验方法:
(1) 用一般琼脂糖凝胶的制备和电泳方法进行低熔点琼脂糖的电泳; (2) 电泳结束后,将含有所需DNA片段的凝胶条切下,放入Ep管中,加入
3倍体积的TE缓冲液,在70℃保温10min,以使凝胶熔化。
(3) 冷却至室温后,加入等体积的酚,充分混匀后以4000g离心10 min,回
收水相,主意不要将截面的白色物质(即粉状的琼脂糖)吸出,再用等体积氯仿:异戊醇抽提一次。
(4) 将上清液转移到一个新的小离心管中,加入0.2倍体积的10mol/L乙酸铵
和2倍体积的乙醇,混合液在室温中放置10min,然后离心沉淀核酸。
二、 回收DNA的纯化 实验方法:
(1) 用20 倍体积含0.6mol/LNaCl的TE(pH7.6)悬浮DEAE-Sephacel,树脂
沉淀后,吸去上清液,再加20倍体积的同种缓冲液,轻轻地悬浮树脂,等树脂再次沉降后吸去大部分上清液,4℃下贮存经平衡处理的树脂。
(2) 将足以结合20μgDNA的0.6ml DEAE-Sephacel悬浮液装入小柱。 (3) 分别用下列缓冲液洗柱:
含0.6mol/L NaCl的TE(pH7.6) TE(pH7.6) 含0.1mol/L NaCl的TE(pH7.6)
3ml 3ml 3ml
(4) 将DNA与加样缓冲液混合上样,将收集的洗脱液加回到柱上。 (5) 用含0.3mol/L NaCl的1.5ml TE(pH7.6)洗柱2次。
(6) 用含0.6mol/L NaCl 1.5ml TE(pH7.6)洗柱3次收集DNA 洗脱液。 (7) 将洗脱液转移到离心管,加等体积的异丙醇,混匀后在室温下放置15min,
4℃12000g离心10min沉淀DNA。
(8) 70%乙醇洗涤沉淀,真空干燥后,溶于200μl TE(Ph7.6)中。 (9) 用等体积分和氯仿:异戊醇各抽提一次,转移水相至一Ep管中。 (10) 加入1/10体积的3mol/L乙酸钠(pH5.2)和2.5倍体积的无水乙醇置-20℃
30min。
(11) 离心,12000g ×15min,弃去上清液,用70%的乙醇洗一次,真空干燥。 (11) 将沉淀用50μlTE缓冲液(pH8.0)溶解,-20℃保存备用。
目前有许多生物技术公司开发出进行此项操作的试剂盒,使用方便、快速,可参照说明书进行。下面附上海生工公司的试剂盒以供大家参考
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主要用途:从TBE或TAE琼脂糖胶中回收DNA片段。 主要特点:
i. ii. iii.
适用范围广,适合于从TBE和TAE琼脂糖胶中回收60bp~40kb的DNA片段,回收效率在80%以上。 省时,全部操作过程仅需20分钟。 操作过程中不需要酚抽提,乙醇沉淀。
50个 50个 20ml 25ml 2 ml
试剂盒组成:
UNIQ-5 columns Collection tubes Binding buffer Wash solutiona Elution buffer
首次使用前必须在Wash solution中加入等体积的无水乙醇,充分混匀后使用,每次使用之后将瓶盖盖紧,以保持Wash solution中的乙醇含量,如果您发现Wash solution由于运输或保管不当造成容量严重不准,请用量筒定容后再加入等体积的乙醇。 操作步骤:
1) 用琼脂糖胶电泳将目的片段与其它DNA尽可能分开,然后用干净的手术刀
片割下所要回收的DNA琼脂糖块,放入1.5ml离心管中。
2) 按每100mg琼脂糖胶加入400μl Binding buffer,置于60度水浴中10分钟,
使胶彻底融化,加热融胶时,每2分钟混匀一次。
注意:对于高浓度的胶如1.5%~2%,每100mg加入700μl Binding buffer,加热融胶的进间可以延长到15min,以保证胶全部融化。
3) UNIQ-5 columns放入Collection tubes中,将融化的胶溶液转移至UNIQ-5
columns中,室温放置2分钟,室温离心(8000rpm)1min。
4) 取出UNIQ-5 columns,弃去收集液,将UNIQ-5 columns再次放入Collection
tubes中,加入450μl Wash solution,室温离心(8000rpm)1min。 5) 重复步骤4。
6) 取出UNIQ-5 columns,弃去收集液,将UNIQ-5 columns再次放入Collection
tubes中,室温离心(12000rpm)1min。
7) 将UNIQ-5 columns放入一个新的Ep管中,在柱膜中央加入30μl的Elution
buffer,室温放置2min。
8) 室温离心(12000rpm)1min,离心管中的液体即含有回收的DNA片段,可立
即使用或者-20℃贮存。
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第三章
实验七:DNA重组连接
基因重组子的构建
DNA重组子的构建中一般使用DNA连接酶,该酶是1967年在三个实验室同时发现的能封闭DNA链上缺口的酶,它借助ATP或NAD水解提供的能量催化DNA链的5'-PO4与另一DNA链的3'-OH生成磷酸二酯键。但这两条链必须是与同一条互补链配对结合的(T4DNA连接酶除外),而且必须是两条紧邻DNA链才能被DNA连接酶催化成磷酸二酯键。
大肠杆菌的DNA连接酶是一条分子量为75KD的多肽链。对胰蛋白酶敏感,可被其水解。水解后形成的小片段仍具有部份活性,可以催化酶与NAD(而不是ATP)反应形成酶-AMP中间物,但不能继续将AMP转移到DNA上促进磷酸二酯键的形成。DNA连接酶在大肠杆菌细胞中约有300个分子,和DNA聚合酶Ⅰ的分子数相近,这也是比较合理的现象。因为DNA连接酶的主要功能就是在DNA聚合酶Ⅰ催化聚合,填满双链DNA上的单链间隙后封闭DNA双链上的缺口。这在DNA复制、修复和重组中起着重要的作用,连接酶有缺陷的突变株不能进行DNA复制、修复和重组。
噬菌体T4DNA连接酶分子也是一条多肽链,分子量为60KD,其活性很容易被0.2mol/L的KCl和精胺所抑制。此酶的催化过程需要ATP辅助。T4DNA连接酶可连接DNA-DNA,DNA- RNA,RNA-RNA和双链DNA粘性末端或平头末端。另外,NH4C1可以提高在大肠杆菌DNA连接酶的的催化速率,而对T4DNA连接酶则无效。无论是T4DNA连接酶,还是大肠杆菌DNA连接酶都不能催化两条游离的DNA链相连接。
DNA连接酶所催化的整个过程是可逆的。酶-AMP复合物可以与NMN或PPi反应生成NDA或ATP及游离酶;DNA-AMP也可以和NMN及游离酶作用重新生成NAD。该逆反应过程可以在AMP存在的情况下使共价闭环超螺旋DNA被连接酶催化,产生有缺口的DNA-AMP,生成松弛的闭环DNA。
在真核生物细胞中也存在DNA连接酶,且有两型,分别称为连接酶Ⅰ和Ⅱ,反应中利用ATP所提供的能量。DNA连接酶Ⅰ分子量约为200KD,主要存在于生长旺盛细胞中,DNA连接Ⅱ分子量约85KD,主要存在于生长不活跃的细胞中(resting cell)。
目的:用T4DNA连接酶将EcoR I酶切并经碱性磷酸酶(CIP)处理的载体pUC18的DNA片段,与目的基因被同一内切酶EcoR I 处理的片段连接起来,构建体外重组DNA分子,同时学习几种DNA连接的方法。
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原理:重组DNA分子是在Mg2+、ATP或NAD存在的连接缓冲液系统中,DNA连接酶利用NAD或ATP中的能量催化两个核酸链之间形成磷酸二酯键,将两种 DNA分子进行连接。
(一) DNA连接作用步骤
1. 辅助因子NAD+或ATP将其腺苷酰基转移到DNA连接酶的一个赖氨酸残基的ε─氨基上形成共价的酶-AMP复合物(腺苷酰酶),同时释放出烟酰胺单核苷酸(NMN)或焦磷酸。
2. 酶-AMP复合物再结合到具有5’-磷酸基和3’-羟基切口的DNA上,将酶-AMP复合物上的腺苷酰基再转移到DNA的5'-磷酸基端,形成一个焦磷酰衍生物,即DNA-AMP。
3. 这个被激活的5'-磷酰基端可以和DNA的3'-OH端反应,产生一个新的磷酸二酯键,把缺口封起来,同时释放出AMP,见下图。
DNA连接酶所催化的整个过程是可逆的。酶-腺苷酸复合物可以与NMN或PPi反应生成NDA或ATP及游离酶;DNA-AMP也可以和NMN及游离酶作用重新生成NAD。该逆反应过程可以在AMP存在的情况下使共价闭环超螺旋DNA被连接酶催化,产生有缺口的DNA-腺苷酸,生成松弛的闭环DNA。
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(二) DNA的连接方式
在T4DNA连接酶作用下的DNA连接反应,一般是随机的,但也可以通过对载体、目的基因的处理以控制与调整DNA的有效连接。
连接方式有:
1.自连,如pUC18 EcoR I片段的自连,可以通过CIP处理克服。目的基因片段的自连由于不带复制起始点,不能在抗性平板上生出菌落,而且可以通过调整DNA浓度比与缩小连接体积减少自连的机率。
2.两种片段相连接,如两个目的基因片段之间,目的基因片段与载体DNA片段之间,前者在抗性平板上不能生长。
3.三个片段以上的自连与互连,一般这种机率较少,双酶切的DNA片段机率更少。总之,连接的组合方式有多种,通过控制载体DNA与目的DNA片段的分子比例,可以影响重组率。一般情况下,对分离片段来讲,载体DNA的摩尔数与目的基因的摩尔数之比为1比5。但目的基因的比例太高,容易产生基因自连后插入载体的多聚体。连接体积太大自连机会增多。 (三) 连接反应条件
1. 缓冲液: 一般都配成5倍到10倍的缓冲液,有Mg、ATP作为辅助因子,提供能量,同时也有些保护与稳定酶活性的物质,如DTT(二硫苏糖醇)以防止酶的活性基因氧化失活。BSA(小牛血清白蛋白)维持一定的蛋白量,以防止因蛋白浓度太低导致酶变性失活。
2. 温度: 连接反应的温度在37℃时有利于连接酶的活性,但是在这个温度下,粘性末端的氢键结合是不稳定的,EcoR I酶切所产生的末端,仅仅通过四个碱基对相结合,这不足以抵抗该温度下的分子热运动。因此做实际操作时,DNA分子粘性末端的连接反应,其温度是折中采取催化反应与末端粘合的温度,为12~16℃。
3. 时间: 12~16小时(过夜)。TaKaRa公司的T4 DNA连接酶在22℃条件下,只需1小时。
仪器与主要试剂:
1. pUC18 EcoR I –CIP处理的DNA片段 2. 目的基因的EcoR I回收片段。 3. T4 DNA连接酶 4. 高浓度的贮存液 (1)1mol/L MgCl2溶液。 (2)1mol/L DTT溶液。 (3)100mmol/L ATPNa2
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