葡萄皮花色苷的提取及稳定性研究（一）(2)

　　1.1.2.2  花色苷的光谱学性质
　　通过紫外-可见光谱法可以对花色苷进行定性[5]。花色苷最大吸收波长一个在可见光区的 500～540nm 处，另一个在紫外 275nm 处，通过测定花色苷提取物的最大吸收波长即可判断是否为花色苷类物质。向花色苷的 0.                                  01 %盐酸甲醇溶液中滴加 3～5 滴 AlCl3 甲醇或乙醇溶液，会出现蓝移，即最大吸收波长增加。通过花色苷最大吸收波长处的吸光度和440nm 处的吸光度的比值（A440/Amax）可以判断出糖苷的位置。酰化的花色苷一般在 300～330nm 间有吸收峰。如果花色苷在 440nm 处没有肩峰，则花色苷的 5 号位的羟基没有被取代。

　　1.2    花色苷研究进展 1.2.1  花色苷的生理活性研究进展 1.2.1.1  消除自由基、抗氧化作用
　　在各种有关衰老的学说中，自由基学说得到越来越多的认同。自由基是生物体氧化过程中产生的中间代谢产物，当机体清除自由基能力下降或体内自由基生成过多时，过剩的自由基在体内堆积，作用于生物膜多不饱和脂肪酸，使之发生脂质过氧化而引起膜结构和功能紊乱，攻击蛋白质引起蛋白质交联，酶活性改变，损伤DNA引起突变，从而引起细胞的破坏、衰亡，最终导致机体的衰老和功能障碍。

　　1.2.1.2  抗诱变作用
　　许多文献报道，花色苷有很强的抗突变作用[17]。目前国外在这方面已有比较深入的研究报道。Yoshimoto[6]等用鼠伤寒沙门氏菌TA98对四种不同颜色甘薯根的水提物进行了抗突变的试验，证明了紫色甘薯中的花色苷对于杂环胺类的致突变的物质具有很好的抑制作用，特别是从紫色甘薯中分离的两种花色苷：矢车菊色素-3-(6，6-咖啡酰阿魏酰槐糖苷)-5-葡萄糖苷(YGM-3)和芍药素-3-(6，6-咖啡酰阿魏酰槐苷)-5-葡萄糖苷(YGM-6)具有很强的抗突变作用，YGM-3抗突变作用大YGM-6。

　　1.2.1.3  降血脂的作用
　　国外已有文献报道，黄酮类物质具有较强的降低血脂血糖作用。Suda[7] [23]等进行了含大量花色苷的紫色甘薯饮料的生理功效试验研究。结果表明，给大鼠喂食含大量花色苷的紫色甘薯饮料后，病鼠血清中谷氨酸-草醋酸转氨酶（GOT）、谷氨酸-焦葡萄糖酸转氨酶（GPT）的上升受到明显地抑制，而且紫甘薯饮料表现出对病鼠血清中的硫化巴比妥酸（TBA）反应物、肝脏中的TBA反应物及氧化脂蛋白的增加均有一定的抑制能力。Matsui等给约两月大的雄性小鼠口服2g/kg麦芽糖和1从紫色甘薯块根中分离出来的一种二酰基花青素，结果表明30分钟后小鼠体内的血糖浓度下降了16.5%，二酰基花青素是通过对α-葡糖苷酶产生抑制作用，从而导致血糖的降低。

　　1.2.2  花色苷的测定方法研究进展
　　目前为止花色苷的定量分析方法主要有直接比色法、pH示差法、亚硫酸脱色法、色谱法[24]。

　　1.2.2.1  直接比色法
　　花色苷的最大吸收区在 500～550nm 内，花色苷总量可以用比色法通过适当波长处的吸光度来测定[25]。该方法测定花色苷总量需要在一个恒定的 pH介质中进行。因为单个花色苷的比消光度很难得到，一般用平均比消光度来测定花色苷总量，其方法可用于定量测定花色苷含量。但也可以用吸光值间接测定花色苷含量。这种方法比较适合测定新鲜植物中的花色苷含量，因为在新鲜植物提取物中很少存在花色苷最大吸收区内的干扰物质[26]。

　　1.2.2.2  pH示差法
　　在含有干扰物质的体系中，花色苷总量的测定，可采用 pH 示差法。这种方法确定两个对花色苷吸光度差别最大但使花色苷稳定的 pH 值，根据 Fuleki 公式可计算花色苷总量，但 pH 示差法需要缓冲静置较长的时间，比较复杂费时。在这基础上经过改良也可以用单 pH 测定法。冯建光等[27]曾用 pH 示差法测定葡萄皮花色苷的总量。黄昉等[28]分别用直接比色测定法、pH 示差法、单 pH 测定法三种不同的方法测定了黑豆种皮花色苷的含量，结果表明单 pH 测定法是三种方法中最适宜用来测定黑大豆皮提取液中花色苷总含量的方法。

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